非瘟处置争分夺秒!复养、精准剔除、日常监测如何做好检测?

            

非瘟处置争分夺秒!复养、精准剔除、日常监测如何做好检测?

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当前,非洲猪瘟疫情仍然时有发生。今年3-4月份累计报告14例疫情,直追2019年同期的16例。众所周知,非瘟是烈性传染病,且潜伏期较长。那么,在非瘟常态化之后,猪场应该如何做好非瘟检测,从而实现早发现早处理?

5月8日,爱德士大中华区市场总监马祥就非瘟检测相关问题,做客新牧网新猪派“稳产保供、抗击疫情”技术讲座直播间,作《非瘟检测那些事》主题报告,为大家分享了精准剔除的检测方案、复养的检测方案、定期监控方案等三大方案。

非瘟处置争分夺秒!复养、精准剔除、日常监测如何做好检测?

精准剔除检测方案4原则

马祥介绍,精准剔除需要提前做场内人员培训、应急物资准备、实验室准备。场内人员培训包括ASF知识及预警报告制度、猪只处理流程、实验室人员操作培训、样品采集(唾液/鼻拭子/直肠拭子/血样/环境样品)。

应急物资准备包括物资(隔板/彩条布/消毒剂)、阳性猪只处理(掩埋场地、通道、人员)、阳性栏舍处理、饮水(水的处理)、饲料等。

实验室准备包括仪器采购调试、核酸提取试剂以及RT-PCR试剂盒确定(特异性高--敏感性高--稳定性好--操作简单)、人员操作、实验室污染处理等。

精准剔除的技术路线包括正常生产风险评估和精准清除阶段。当发现疑似病例之后,从车辆、人员、环境、物资等方面进行检测分析。确诊阳性之后的精准剔除有4大原则:筛查原则、混样原则、淘汰原则、新增病例处理原则。

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筛查原则:首先全场采样筛查,7天内检测两次,两周内对母猪群进行4-6次检测,选择口鼻拭子为样本。

混样原则:推荐三合一混样,根据临床可适当调整。

淘汰原则:初筛阳性猪及低CT建议高规格淘汰,猪不落地;CT值33-36,直接淘汰,注意消毒;CT值低于28,隔断通槽。(以上CT值仅供参考,猪场应用需根据自身使用的检测试剂品质来建立)

新增病例:以此为中心,半径5米筛查,连续三天;整栋筛查。

复养猪场检测方案10 步骤

猪场复养之前,需要对周边疫情进行调查、溯源分析,对员工进行培训;做好猪场生物安全改造配套,建立监测体系,做好猪场清群后的处理。

马祥介绍,猪场最基本的硬件改造是洗消中心建立、人流和物流原则建立(生产人员更衣冲凉,更换生产内部衣物后进入生产线;卖猪时,人员赶猪后,不得原路返回)。

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复养前还要对场地栏舍进行洗消,可以用烧碱+戊二醛。基本洗消流程参考如下:

1、用3%烧碱喷场地、墙壁、铁栏(注意人员安全防护),以初步清除残留污垢和灭杀病原;

2、采用清水高压清洗;

3、用2%的烧碱喷场地、墙壁和铁栏,以深度清除残留污垢和杀灭病原;

4、清水高压清洗;

5、戊二醛全面消毒一遍,以杀灭病原;

6、次氯酸钠类消毒剂全面消毒一次,灭杀病原同时去除病原核酸;

7、空栏7-10周;

8、粪沟直接用4%烧碱灭杀病原;

9、宿舍、饭堂清洗后熏蒸消毒;

10、通风、干燥。

定期监控,不同主场不同方案

针对阴性场、复养场和耐过场,马祥为大家分享了以下定期监控方案:

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检测的样品采集方法介绍

非瘟检测中,应对车辆(运猪车、饲料车)、人员(头发、指甲、衣服、鞋底)、环境(场地表面、土壤、栏舍、通风设备、空气样品)、猪(口腔分泌物、鼻腔分泌物、直肠分泌物、血液样品、精液)分别采样。

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环境采样:采样点包括:1、猪舍内部环境:猪栏表面,地面和侧壁,料槽或料线,猪舍门口。2、场内转运:出猪通道,挡猪板,出猪舍;3、无害化处理设施:病死猪存放地,病死猪掩埋地,土壤。4、饲料供应系统:饲料生产区,出料口,设备表面,料塔出料口。5、饮水系统:水源,猪舍饮用水。6、通风系统:风扇舍内表面,百叶或窗户,水帘。7、粪污处理:漏粪地板背面,粪沟侧面。

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唾液采样方法:唾液采集袋或棉绳悬挂于栏舍内或定位栏前,猪只充分咀嚼6-8小时后取下,置于密封袋或胶袋内,剪去袋子一角后挤压棉块或棉绳,将收集的唾液滴至离心管中,合盖并标记编号送检。

对于按时饲喂的定位栏等猪栏,在喂料前半小时左右进行唾液采集。对于自由采食的大栏等猪栏,猪只充分咀嚼棉绳或棉块3-4小时后取下。

鼻拭子采样方法:使用前用无菌生理盐水浸润沾湿。采样时带上一次性手套,拿着棉棒的一端(一般每头猪头2个棉棒),带棉签的一端伸进猪的鼻孔3-5cm左右,在鼻腔的内迅速转两圈,拿出来后反脱下一次性手套,把棉棒套在手套里面,封上口(必要时需要保定猪只)。

将棉拭子放在离心管中,加入无菌生理盐水,浸泡30分钟,中间用涡旋机震荡,让目的病原充分洗脱在生理盐水里面,抽取浸泡后的上清进行DNA提取。

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精液及血液样品采集:采用精液样本裂解处理---配合IDEXX专门的组织裂解液RealPCR TL-60ᶧ 缓冲液,1mL精液样本12,000 x g离心4分钟。在离心后弃去上清。然后加入400 uL RealPCR TL-60ᶧ 缓冲液,使用枪头吸打混匀。70°C孵育10分钟。将裂解后的样本15,000 x g离心1分钟,取400 uL澄清的裂解液于收集管中。

血液样品则可以采用前腔静脉采血、耳缘静脉采血、尾根采血等方法。


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